L’utilisation d’un masque fait partie des principales mesures barrières permettant de réduire la transmission de la Covid-19, l’effet du port du masque sur la saturation en oxygène (SpO2) est une question récurrente chez les patients asthmatiques. Les patients adultes et pédiatriques consécutifs qui se sont présentés à un centre spécialisé dans la prise en charge de l’asthme (dans le Michigan, États-Unis) entre le 9 et le 23 octobre2020 ont été invités à répondre à une enquête portant sur les caractéristiques démographiques, le diagnostic d’asthme, la perception du contrôle de l’asthme et le type de masque porté. Une oxymétrie de pouls a été réalisée pendant le port du masque, et les répondeurs ont indiqué la durée d’utilisation du masque avant la mesure. Au total, 230 questionnaires ont été recueillis, et 7 questionnaires sans mesure adéquate de la SpO2 ont été exclus. Sur les 223 enquêtes analysées, 40 % étaient des hommes (n = 89), 46 % ont déclaré souffrir d’asthme (n = 102) et 27 % étaient âgés de 19 ans ou moins (n = 60). La SpO2 se situait entre 93 et 100 % (moyenne de 98 %) chez les personnes asthmatiques (n = 102), et entre 93 et 100 % (moyenne de 98 %) chez les personnes non asthmatiques (n = 121) (figure).
La moyenne de la SpO2
n’a pas montré de différence significative après ajustement en fonction
du sexe (hommes : 98 %, femmes : 98 %), de l’origine ethnique
(Afro-Américains : 98,5 %, Caucasiens : 98 %, autres : 98 à 99,5 %), du
type de masque utilisé (tissu : 98 %, n = 119 ; chirurgical : 98 %, n =
83 ; masque N95 : 99 %, n = 3), ou de la durée de port du masque (< 1
heure : 98 %, 1 heure ou plus : 99 %). Les asthmatiques ayant répondu
au questionnaire et déclaré leur niveau de contrôle (n = 100) avaient
une SpO2 moyenne similaire dans les groupes asthme bien
contrôlé (n = 80, moyenne de 98 %), assez contrôlé (n = 18, moyenne de
98 %) et non contrôlé (n = 2, moyenne de 96,5 %).
En conclusion, cette étude montre que le port du masque n’a pas diminué les taux de SpO2 chez les patients, qu’ils soient asthmatiques ou non, et ce, quel que soit le type de masque porté. Ni la durée de port du masque, ni la perception du contrôle de l’asthme n’ont été corrélées avec un taux diminué de SpO2.
D’après Hodges M et al., abstr. L18, actualisé . paru sur la revue , la lettre du Pneumologue. – Actualités au congrès AAAAI
( American Academy of Allergy, Asthma & Immunology, ) Édition virtuelle, 26 février – 1er mars 2021
La question de savoir si l’asthme est un facteur de risque associé à
une évolution péjorative chez les patients atteints de Covid-19 demeure
jusqu’à présent non résolue.
Cette analyse de la Mayo Clinic a
été réalisée à partir de la base de données des études Covid-19 publiées
jusqu’au 2 octobre 2020 (patients avec infection à SARS-CoV-2 confirmée
avec ou sans asthme associé). Les critères d’évaluation comprenaient la
nécessité d’une hospitalisation, la durée de l’hospitalisation,
l’admission en unité de soins intensifs (USI) et le décès. La
méta-analyse a permis d’identifier 389 études. Après examen des résumés
et du texte intégral, 16 études observationnelles portant sur 92 275
patients ont été retenues dans l’analyse. Sur ces 16 études, 15 étaient
rétrospectives et 1 concernait une cohorte prospective. L’âge moyen
était de 37,7 ans ; 63 % des patients étaient des femmes. Deux des
études ont spécifiquement évalué des patientes enceintes, et 2 autres
n’ont inclus que des enfants. Les résultats (figure)
montrent que, chez les patients atteints d’une infection à SARS-CoV-2,
la présence d’asthme n’est pas associée à une augmentation significative
du risque d’hospitalisation (OR = 1,46 ; IC95 : 0,29-7,28), de la durée d’hospitalisation (1,59 jour ; IC95 : –0,55 ; 3,74), de l’admission en USI (OR = 1,65 ; IC95 : 0,56-4,17) ou du décès (OR = 0,73 ; IC95 : 0,38-1,40).
Malgré
un risque global de biais élevé, cette étude montre que l’asthme n’a
pas eu d’impact délétère chez les patients infectés par le SARS-CoV-2.
Le rôle de l’inflammation de type 2 et de l’utilisation de
corticostéroïdes inhalés dans cette population mérite cependant d’être
étudié plus en détail.
D’après Sitek AN et al., abstr. L28, actualisé – La lettre du Pneumologue – American Academy of Allergy, Asthma & Immunology Édition virtuelle, 26 février – 1er mars 2021
Alors que le coronavirus responsable de la COVID-19 se propage dans le monde entier, l’AIEA, en partenariat avec l’Organisation des Nations Unies pour l’alimentation et l’agriculture (FAO), propose aux pays une assistance et met à disposition ses compétences pour les aider à utiliser la réaction de polymérisation en chaîne après transcription inverse en temps réel (RT-PCR en temps réel), l’une des méthodes de laboratoire les plus rapides et les plus précises qui soient pour détecter, suivre et étudier le virus à l’origine de cette maladie.
Mais qu’est-ce que la RT-PCR en temps réel ? Comment fonctionne-t-elle ? En quoi diffère-t-elle de la PCR ? Et qu’a-t-elle à voir avec la technologie nucléaire ? Nous avons voulu, dans l’article qui suit, expliquer cette technique et notamment son fonctionnement, et revenir sur quelques points concernant les virus et la génétique.
Qu’est-ce que la RT-PCR en temps réel ?
La RT-PCR en temps réel est une technique dérivée du nucléaire qui permet de détecter la présence de matériel génétique propre à un agent pathogène, notamment un virus. Initialement, le matériel génétique cible était détecté au moyen de marqueurs isotopiques radioactifs, mais la méthode a ensuite été perfectionnée et d’autres types de marqueurs, le plus souvent des colorants fluorescents, remplacent aujourd’hui les isotopes. Avec cette technique, les scientifiques peuvent visualiser les résultats de façon presque immédiate, avant que le processus soit terminé, tandis que la RT-PCR classique ne livre ses résultats que tout à la fin.
La RT-PCR en temps réel est l’une des techniques de laboratoire les plus utilisées pour détecter le virus de la COVID-19. De nombreux pays y ont eu recours pour dépister d’autres maladies, notamment les maladies à virus Ebola et à virus Zika, mais nombreux aussi sont ceux qui ont encore besoin d’une assistance pour adapter la méthode au virus de la COVID-19 et renforcer leurs capacités de diagnostic à l’échelle nationale.
Qu’est-ce qu’un virus et qu’est-ce que le matériel génétique ?
Un virus est un organisme microscopique constitué de matériel génétique entouré d’une enveloppe moléculaire. Ce matériel génétique peut être composé d’acide désoxyribonucléique (ADN) ou d’acide ribonucléique (ARN).
L’ADN est une molécule à deux brins présente dans
tout type d’organismes, notamment les animaux, les plantes et certains
virus, qui contient le code génétique, c’est-à-dire le programme selon
lequel l’organisme se forme et se développe.
L’ARN est une molécule, généralement composée d’un seul brin, qui copie, ou transcrit, une partie du code génétique de l’organisme pour la transmettre à des protéines qui synthétisent des molécules nécessaires à l’accomplissement des fonctions essentielles à la vie et au développement de l’organisme. Il existe différents types d’ARN permettant la copie, ou transcription, et la transmission du matériel génétique.
Certains virus, dont le coronavirus SARS-CoV-2, qui est responsable
de la COVID-19, ne contiennent que de l’ARN, ce qui signifie qu’ils ont
besoin de s’infiltrer dans des cellules saines pour se multiplier et
survivre. Une fois dans la cellule, le virus utilise son propre code
génétique (de l’ARN dans le cas du virus de la COVID-19) pour prendre le
contrôle de celle-ci et la « reprogrammer » pour qu’elle se mette à
produire des virus.
Pour détecter précocement ce type de virus dans l’organisme à l’aide
de la RT-PCR en temps réel, les scientifiques doivent convertir son ARN
en ADN selon un processus appelé « transcription inverse ». Cette étape
est nécessaire car seul l’ADN peut être copié, ou « amplifié », en
laboratoire. Or, l’amplification est une étape clé du processus de
RT-PCR en temps réel pour la détection des virus.
Les scientifiques amplifient plusieurs centaines de milliers de fois
une partie de l’ADN viral transcrit. L’amplification est une étape
importante car elle permet aux scientifiques d’obtenir une quantité
suffisamment grande de séquences d’ADN viral cibles pour pouvoir
confirmer avec exactitude la présence du virus, et leur évite d’avoir à
rechercher une quantité infime du virus parmi des millions de brins
d’information génétique.
Comment fonctionne la RT-PCR en temps réel avec le virus de la COVID-19 ?
On prélève un échantillon sur les parties du corps où le virus
responsable de la COVID-19 s’accumule, comme le nez ou la gorge. On
traite l’échantillon avec plusieurs solutions chimiques pour le
débarrasser de certaines substances, notamment les protéines et les
graisses, et extraire uniquement l’ARN qu’il contient. L’ARN ainsi
extrait est composé à la fois du matériel génétique de la personne et,
s’il est présent, de l’ARN du virus.
L’ARN est alors converti en ADN, lors de la transcription inverse,
grâce à une enzyme spécifique. Les scientifiques ajoutent ensuite de
courts fragments d’ADN complémentaires de certaines séquences de l’ADN
viral transcrit. Si le virus est présent dans l’échantillon, ces
fragments s’attachent aux séquences d’ADN viral cibles. Certains des
fragments d’ADN ajoutés servent uniquement à construire de nouveaux
brins d’ADN lors de l’amplification, tandis que les autres servent aussi
au marquage des brins qui permettront de détecter le virus.
Le mélange est ensuite placé dans un appareil de RT-PCR, où il est
chauffé et refroidi suivant des cycles qui déclenchent des réactions
chimiques permettant d’obtenir de nouvelles copies, identiques, des
séquences d’ADN viral cibles. Les cycles se répètent de nombreuses fois
pour continuer à copier ces séquences. À chaque cycle, la quantité
double : on passe de deux copies à quatre, puis de quatre à huit, et
ainsi de suite. Le processus de RT-PCR en temps réel comprend
généralement 35 cycles, ce qui signifie qu’à la fin du processus environ
35 milliards de nouvelles copies des séquences d’ADN viral sont
produites à partir de chaque brin d’ARN viral présent dans
l’échantillon.
À mesure que les copies des séquences de l’ADN viral sont produites, les marqueurs se fixent sur les brins d’ADN et émettent une fluorescence qui est mesurée par l’ordinateur de l’appareil. Les résultats s’affichent en temps réel à l’écran. L’ordinateur effectue un suivi de la quantité de fluorescence dans l’échantillon à la fin de chaque cycle. Lorsque le niveau de fluorescence dépasse un certain seuil, la présence du virus est confirmée. Le nombre de cycles nécessaires pour atteindre ce seuil permet également aux scientifiques d’estimer la gravité de l’infection : plus le seuil est atteint rapidement, plus l’infection est grave.
Pourquoi utiliser la RT-PCR en temps réel ?
La technique de RT-PCR en temps réel, hautement sensible et
spécialisée, permet d’établir un diagnostic fiable en seulement trois
heures, bien que les laboratoires mettent six à huit heures en moyenne.
Elle est beaucoup plus rapide que les autres méthodes d’isolement de
virus disponibles et présente un risque plus faible de contamination ou
d’erreur puisque toutes les étapes peuvent être réalisées dans un tube
fermé. De toutes les techniques disponibles, elle reste la plus précise
pour le dépistage du virus de la COVID-19.
Mais étant donné que les virus ne sont présents dans l’organisme que
pendant une certaine durée, la RT‑PCR en temps réel ne permet pas de
déterminer si un individu a été infecté par le passé, ce qui est
pourtant essentiel pour comprendre comment le virus se développe et se
propage. Pour détecter, suivre et étudier les infections passées, en
particulier les infections asymptomatiques qui auraient contribué à la
propagation du virus, d’autres méthodes sont nécessaires.
Qu’est-ce que la PCR et en quoi diffère-t-elle de la RT-PCR en temps réel ?
La RT-PCR est une variante de la PCR, ou réaction de polymérisation
en chaîne. Les deux techniques reposent sur le même processus, mais la
RT-PCR prévoit une étape supplémentaire, la transcription inverse de
l’ARN en ADN, ou RT, qui est nécessaire pour pouvoir passer à
l’amplification du matériel génétique. La PCR ne peut donc être utilisée
que sur des agents pathogènes, tels que des virus et des bactéries, qui
contiennent déjà de l’ADN, alors que la RT-PCR permet de transcrire
l’ARN en ADN, pour ensuite l’amplifier. Les deux méthodes se prêtent à
un suivi « en temps réel », c’est-à-dire que les résultats peuvent être
visualisés de façon presque immédiate, alors qu’avec les versions «
classiques » du test, les résultats ne peuvent être obtenus qu’à la
toute fin de la réaction.
La PCR fait partie des tests de dépistage les plus utilisés pour détecter les agents pathogènes, notamment les virus, qui sont responsables de maladies comme la fièvre hémorragique à virus Ebola, la peste porcine africaine et la fièvre aphteuse. Étant donné que le virus de la COVID-19 renferme uniquement de l’ARN, on a recours à la RT-PCR en temps réel ou classique pour le détecter.
